Volume 5, No. 3 • October 2022   Issue PDF

أفضل الطرق الممارسة لمكافحة العدوى في منطقة عمل التخدير: ماذا تنتظر؟ ماذا تنتظر؟

Jonathan E. Charnin،‏ MD،‏ FASA؛‏ Melanie Hollidge،‏ MD،‏ PhD؛‏ Raquel Bartz،‏ MD،‏ MMCi؛‏ Desiree Chappell،‏ CRNA؛‏ Jonathan M. Tan،‏ MD،‏ MPH،‏ MBI،‏ FASA؛‏ Morgan Hellman،‏ RN،‏ BSN؛‏ Sara McMannus،‏ RN،‏ BSN،‏ MBA؛‏ Richard A. Beers،‏ MD؛‏ Michelle Beam،‏ DO،‏ MBA،‏ FASA؛‏ Randy Loftus،‏ MD
Summary: 

يمكن أن تؤدي تدابير مكافحة العدوى الأساسية المستندة إلى الأدلة والمنفذة بشكل فعال في منطقة العمل الخاصة بالتخدير إلى الحد من انتقال العوامل المسببة للأمراض والإصابة بعدوى في مكان الجراحة بشكل كبير. هذه التدابير محددة لتحسين سلامة المرضى. في هذه المراجعة الموجزة، نصنف التدابير الوقائية الأساسية مع مراعاة عدد من العوائق للتنفيذ وتوضيح ميزات التنفيذ الرئيسية.

مقدمة

غرف العملياتتُعد مكافحة العدوى أمرًا بالغ الأهمية لاختصاصيي التخدير في 2022 نظرًا إلى الأمراض المعدية المستجدة مثل كوفيد-191 وجدري القرود2 وفطر داء البقع البيضاء3 والطبيعة العنيدة لعدوى موضع الجراحة (SSIs) المرتبطة بزيادة معدلات الاعتلال والوفيات لدى المرضى.4‏‎-6 بالإضافة إلى ذلك، بما أن أي عدوى يمكن أن تؤدي إلى تعفن الدم، فإن مكافحة العدوى هي مكافحة تعفن الدم.7 أثبتت تدابير مكافحة العدوى الأساسية في الفترة المحيطة بالجراحة المستندة إلى الأدلة بأن مكافحة العدوى في منطقة عمل التخدير أثبتت فعاليتها في معالجة مسببات الأمراض الفيروسية8 والبكتيرية، ما أدى إلى انخفاض كبير في انتقال مسببات الأمراض والعدوى اللاحقة.8‏‎-10 حان الوقت لاختصاصيي التخدير، الذين دائمًا ما كانوا روادًا في سلامة المرضى، للاستفادة من المنصة الراسخة للأدلة المنشورة لتحسين سلامة مرضانا من خلال مكافحة العدوى.11

في هذه المراجعة نبرز ميزات التنفيذ المهمة للتدابير الوقائية الأساسية مع القليل من عوائق التنفيذ الملحوظة. تستند هذه النُهج إلى كل من المؤلفات الحالية وإرشادات مكافحة العدوى ذات الصلة (جمعية الرعاية الصحية وعلم الأوبئة الأمريكية [SHEA] ‏12 وجمعية اختصاصيي مكافحة العدوى [APIC]‏ 13 ومراكز السيطرة على الأمراض ومكافحة العدوى [CDC] ‏14 والجمعية الأمريكية لأطباء التخدير [ASA]‏ 15 والجمعية الأمريكية لأمراض التخدير [AANA]‏ [AANA]16). نصف هنا أربع ركائز لتدابير مكافحة العدوى في الفترة المحيطة بالجراحة التي يمكن تطبيقها على جميع مقدمي الخدمات في الفترة المحيطة بالجراحة، بما في ذلك علاج المريض من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات ونظافة اليدين والعناية بالأوعية الدموية والتنظيف البيئي المحسّن من خلال المراقبة والتعليقات.8,12

تمثل التدخلات الموصى بها أفضل ممارسات تم تصميمها لمعالجة مسارات العدوى الأولية التي تشمل 1) التلوث المباشر للجرح، 2) انتشارًا معديًا بعد تلوث جلد المريض الذي يحدث نتيجة الإصابة بمسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات أو الإصابة بمسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات الناتجة عن رعاية المرضى، 3) انتشار الجسيمات الملوثة بمسببات الأمراض الناشئة عن تلوث مناطق عمل التخدير المختلفة مثل الأسطح/المعدات البيئية الملوثة، 4) انتشار الدم الناتج عن حقن مسببات الأمراض البكتيرية عبر منفذ الحقن و/أو طرف المحقنة و/أو تلوث قارورة الدواء.17 والأهم من ذلك، هذه التوصيات منخفضة التكلفة18 وعملية9 ولها قابلية تنفيذ مؤكدة.10

في حين أن كلاً من هذه التدابير الوقائية قد تبدو مألوفة وقد يبدو في البداية أنك وزملاءك تستخدمون بالفعل هذه الممارسات، يُرجى النظر بعناية في ميزات تنفيذ كل توصية. يُعد استخدام “الجرعة” المناسبة من التدخل أمرًا مهمًا للحصول على الفوائد لمرضاك.8‏‎-10,19 الشكل 1 عبارة عن رسم بياني تم إعداده لتصوير كيفية امتداد مكافحة العدوى عبر السلسلة المتصلة بالفترة المحيطة بالجراحة. يعد النهج متعدد الأوجه الذي يتضمن علاج المريض من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات ونظافة اليدين والعناية بالأوعية الدموية وجهود تحسين التنظيف البيئي التي يتم تنفيذها في الوقت نفسه في أثناء عملية رعاية المريض وتحسينها من خلال التعليقات مدعومًا بدراسة دقيقة حول علم الأوبئة في الفترة المحيطة بالجراحة لانتقال البكتيريا20‏‎-24 ويتميز بأنه ذو فعالية مثبتة.8‏‎-10 ومع ذلك، فإن التدخلات المنفردة، مثل نظافة اليدين،25,26 أو علاج المريض من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات27 أو التنظيف البيئي28 من دون تحسين التعليقات قد تكون عرضة للفشل.

الشكل رقم 1: فرص عالية القيمة مستندة إلى الأدلة لتخفيف انتقال العدوى عبر السلسلة المتصلة بالفترة المحيطة بالجراحة.

الشكل رقم 1: فرص عالية القيمة مستندة إلى الأدلة لتخفيف انتقال العدوى عبر السلسلة المتصلة بالفترة المحيطة بالجراحة.

علاج المريض من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات:

التوصيات:

  1. جرعتان من بوفيدون أيودين بتركيز 5% توضع في الأنف خلال ساعة واحدة من الشق الجراحي8,29 واستخدام مناديل مبللة تحتوي على غلوكونات الكلورهيكسيدين بتركيز 2% في صباح يوم الجراحة.8,10,30
    أو
  2. يومين على الأقل من العلاج (يفضل اليوم السابق للجراحة ويوم الجراحة) يوصى باستخدام مرهم موبيروسين للأنف بتركيز 5% مع مناديل مبللة تحتوي على غلوكونات الكلورهيكسيدين بتركيز 2% أو صابون بتركيز 4%.30‏‎-32
  3. وصف أدوية لعلاج المرضى من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات بعد الخروج من المستشفى للمرضى المصابين بالمكورات العنقودية الذهبية المقاومة للميثيسيلين (MRSA) نتيجة التعرض للرعاية الصحية.32

الأسباب: تتضمن وبائيات انتقال المكورات العنقودية الذهبية في أثناء الفترة المحيطة بالجراحة الإصابة بمسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات في أماكن جلد المريض (فتحة الأنف و/أو الإبط و/أو الفخذ). ‎8,10,33-35 يرتبط تطور العدوى بعد الجراحة ارتباطًا وثيقًا بالإصابة بالمكورات العنقودية الذهبية المقاومة لمضادات الميكروبات في هذه الأماكن.20,34,35 كما هو مذكور أعلاه في التوصيات 1 و2، فإن علاج المريض من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات في أماكن الجلد يقلل التهابات مكان الجراحة.‎8,10,30-32 لا تزال تدخلات علاج المريض من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات تتطلب مزيدًا من البحث. يمكن أن يؤدي علاج المرضى من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات بعد الجراحة في المرضى المصابين بالمكورات العنقودية الذهبية المقاومة للميثيسيلين (MRSA) نتيجة التعرض للرعاية الصحية إلى الحد من خطر الإصابة بالعدوى الغازية بشكل كبير لمدة تصل إلى عام بعد التعرض للرعاية الصحية.32 يمكن للوقاية من انتقال العدوى الذي يؤدي إلى الإصابة بمسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات في أثناء الفترة المحيطة بالجراحة أن يَزيد منها.8,10

ميزات التنفيذ الرئيسية: يُعد اختيار عامل علاج المريض من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات أمرًا مهمًا مع زيادة مقاومة المضاد الحيوي المرتبطة بزيادة معدل الوفيات في جميع أنحاء العالم.36,37 يُعد كل من الأيودين والموبيروسين فعالين في الوقاية من عدوى مكان الجراحة (SSI).‏29-31 ارتبط دواء موبيروسين للأنف إلى حد ما بزيادة المقاومة،38 بينما لم يرتبط الأيودين بذلك.39,40 يمكن إدارة الأيودين قبل الجراحة بواسطة اختصاصي التخدير من خلال إعطاء جرعتين قبل الشق.8,29 بينما يتطلب دواء موبيروسين للأنف من يومين إلى 5 أيام من العلاج.30,31
 تُعد المراقبة المحددة لامتثال المريض ومقدم الرعاية لمكونات علاج استعمار البكتيريا الموصوفة أمرًا مهمًا. كما تُعد التعليقات الموجهة لمقدمي الرعاية ومراقبة الاستخدام المتوقع لموارد علاج المريض من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات مهمة كذلك.8,10

نظافة اليدين

التوصيات:

  1. 1.زيادة عدد مرات تنظيف اليدين في أثناء رعاية التخدير. إجراء تنظيف اليدين 8 مرات على الأقل في الساعة41 في أثناء رعاية التخدير و4 مرات على الأقل في الساعة في أثناء تقديم الرعاية في بيئات الرعاية الحرجة.42
  2. 2.تحسين مرات التنظيف البيئي وجودته لمساعدة جهود تحسين نظافة اليدين.8‏‎-10,43,44

الميكروباتالأسباب: يكون الاتصال ببيئة غرفة العمليات متكررًا وسريع الوتيرة في أثناء تقديم رعاية التخدير، وغالبًا ما يتضمن اللمس المتزامن للمريض والبيئة/المعدات.45 بالنظر إلى الارتباط الواضح بين التلوث اليدوي والبيئية المحيطة، 41يمكن أن يؤدي تحسين نظافة اليدين إلى الحد من أحداث الانتقالات المعدية البيئية المحتملة.41,43,46 بشكل مثالي، يتم تنظيف اليدين قبل ملامسة المريض وبعدها، وبعد التعرض لسوائل الجسم، وبعد ملامسة البيئة الملوثة، وقبل إجراء مهمة تنظيف/تعقيم:41,47 هذه هي “الأوقات الخمسة لتنظيف اليدين” التي وصفتها منظمة الصحة العالمية (WHO). في أثناء القيام بالتخدير، يجب القيام بتنظيف اليدين بشكل متكرر وبعناية لاستغلال أكبر عدد ممكن من الفرص للحد من انتقال العوامل المسببة للأمراض. في حين أنه قد لا يكون من الممكن القيام بتنظيف اليدين بعد كل حدث حددته إرشادات منظمة الصحة العالمية (WHO)، يجب على اختصاصيي التخدير بذل المزيد من الجهد للحد من انتقال العوامل المسببة للأمراض في غرف العمليات. بالاستناد إلى البيانات المنشورة، فإن القيام بتنظيف اليدين ثماني مرات على الأقل كل ساعة سيقلل أحداث الانتقالات المحتملة بشكل كبير.41 في خطوة ذات صلة، يمكن أن يقلل التنظيف البيئي الأكثر تكرارًا وذو الجودة الأفضل احتمالية أحداث الانتقالات المرتبطة بتلوث اليدين.8,10,41,43,46 قد يؤدي ارتداء القفازين في أثناء البدء في التخدير إلى زيادة جهود نظافة اليدين المستندة إلى منظمة الصحة العالمية (WHO)، ولكن يُشار إلى المزيد من الدراسات السريرية قبل اعتماد الاختبار البيئي المحاكي لهذا النهج فقط.45

ميزات التنفيذ الرئيسية: من المهم وضع معقمات اليدين في مكان يسهل على مقدمي الرعاية الوصول إليه في أثناء العملية، بما في ذلك بشكل مثالي في عدة أماكن حول منطقة العمل الخاصة بالتخدير، لتسهيل الاستخدام في أثناء رعاية المرضى سريعة الوتيرة.41,43,44 ضع في الحسبان وضع معقمات اليدين التي تحتوي على الكحول على آلة التخدير، والمثبتة على عمود الحقن الوريدي8,10 وعلى خصر مقدم الرعاية.41 لا تقتصر أهمية نظافة اليدين على أعضاء فريق التخدير. يجب على جميع أعضاء فريق الفترة المحيطة بالجراحة (أي الممرضين المتجولين وتقنيي التطهير عن طريق الفرك والجراحين وتقنيي التخدير السريري والمتدربين وممثلي المعدات) اتباع التدابير الموصى بها عند تقديم رعاية المرضى في أثناء الفترة المحيطة بالجراحة.

الرعاية المتعلقة بالأوعية الدموية

التوصيات:

  1. تعقيم منافذ الحقن باستخدام من 70% إلى 90% من كحول الإيزوبروبانول قبل الوصول إليها. نقترح القيام بالتطهير عن طريق الفرك بقوة لإنتاج احتكاك لمدة من 5 إلى 30 ثانية متبوعًا بالتجفيف.48‏‎-53 إذا كنت تستخدم أغطية مصممة لتنظيف الموصلات غير الإبرية، فاستخدم المنتجات التي أثبتت فعاليتها واتبع توصيات الشركة المصنعة. تتطلب بعض هذه الأجهزة 10 ثوانٍ على الأقل من وقت الاتصال لتكون فعالة.49
  2. 2.تجنب استخدام التجاويف المفتوحة (على سبيل المثال، محابس الحقن المكشوفة) لأنها عرضة لخطر التلوث المتزايد، ولا يمكن تطهيرها جيدًا بمجرد تلوثها،50 وقد ارتبط التلوث بشكل متكرر بزيادة معدل وفيات المرضى.20,52
  3. 3.تنظيف جميع قوارير الدواء بمنديل مبلل يحتوي على الكحول بعد إزالة غطاء الغبار من القارورة وقبل الوصول إليها لمنع التلوث والعدوى.53 الاحتفاظ بمنافذ الحقن وأطراف المحاقن وأنابيب الحقن الوريدي بعيدًا عن الأرض.49

الأسباب: يجب تطهير منافذ الحقن وقوارير الدواء عن طريق الفرك باستخدام ماسحة تحتوي على 70% إلى 90% من كحول الإيزوبروبانول قبل كل توصيل.8,10 بينما لا يوجد إجماع على مدة تطهير منفذ الحقن عن طريق الفرك باستخدام ماسحات تحتوي على الإيثانول، فإننا نوصي بوقت إجمالي يتراوح بين 5 و30 ثانية مع الفرك بقوة لإنتاج احتكاك يتبعه تجفيف بالهواء.48‏‎-53 تبين أن التطهير عن طريق الفرك بهذه الطريقة متبوعًا بوقت تجفيف يبلغ 30 ثانية يمنع حقن البكتيريا من يديِ اختصاصي التخدير في دراسة عشوائية خارج الجسم الحي.48

أظهرت الأبحاث أن ما يصل إلى 50,000 وحدة من مستعمرات البكتيريا الحية يتم حقنها في مسار السائل الوريدي (IV) نتيجة لانتهاكات في ممارسة التعقيم الجيدة الخاصة بالوصول إلى الأوعية الدموية كما هو موضح أعلاه.48 هذا هو المسار الأساسي لمكان الجراحة وتطور عدوى مجرى الدم54 الذي يمكن أن يزيد معدل وفيات المرضى عدة مرات.55 الأهم من ذلك، أن تلوث محبس الحقن في أثناء العملية قد ارتبط بشكل متكرر بزيادة معدل وفيات المرضى وارتبط بشكل مباشر من خلال النوع الجزيئي المتقدم لتطوير الإصابة بالعدوى بعد الجراحة.20,56 لقد أوضحت التجارب السريرية العشوائية الخاضعة للإشراف في العديد من المراكز41 أن تحسين الرعاية المتعلقة بالأوعية الدموية من خلال استخدام منافذ الحقن مع أغطية التطهير المثبتة على عمود الحقن الوريدي (IV) يمكن أن يؤدي إلى تقليل انتقال العوامل المسببة للأمراض والمضاعفات المعدية بشكل كبير. وقد أكدت الدراسات الأخيرة على تلوث محبس الحقن الوريدي الخاص بالمريض في أثناء العملية بفيروس ٍارس 2، SARS-CoV-2،‏9 تمتد أهمية هذه التوصيات إلى ما يتخطى العوامل المسببة للأمراض البكتيرية.

ميزات التنفيذ الرئيسية: وجود ضمادات وأغطية مطهرة تحتوي على الكحول بالقرب من مقدمي الرعاية، ما يتيح سهولة الوصول إلى أدوات التطهير.44 استخدام وقت تطهير مناسب لكل أسلوب تطهير.48‏‎-50

التنظيف البيئي

التوصيات:

  1. إجراء التنظيف بعد البدء في التخدير/التسكين باستخدام نهج ذا جانبين يتضمن مناديل مبللة تحتوي على نوع واحد على الأقل من الكحول ومركب أمونيوم رباعي.43,46 استخدم قطعة قماش مصنوعة من الألياف الدقيقة لزيادة إزالة العبء الحيوي.28
  2. 2.توزيع البيئة إلى مساحات نظيفة/متسخة.46
  3. 3.زيادة تنظيف السطح وتطهيره باستخدام أشعة فوق بنفسجية مُثبتة الفعالية والكفاءة وقابلية التنفيذ.9 استخدام المراقبة للتنفيذ الموجه لإجراءات التنظيف الأكثر تقدمًا.10,21,57

الأسباب: يُعد التنظيف البيئي في أثناء الفترة المحيطة بالجراحة متعدد الجوانب، وهذا يشمل التنظيف الروتيني والتنظيف بين الحالة والأخرى والتنظيف النهائي. يبلغ التلوث البيئي ذروته في أثناء بدء التخدير وانهائه وفي فترات رعاية المريض التي ترتبط بأقل مستويات الامتثال لنظافة اليدين.43 كما أن بيئة منطقة العمل الخاصة بالتخدير، التي يمثلها صمام الحد من الضغط القابل للتعديل وقرص الأداة في آلة التخدير، تُعد وسيلة نقل فعالة مع أحداث الانتقال المرتبطة بشكل مباشر بتطور العدوى.20,53 يمكن ربط 50% على الأقل من عدوى مكان الجراحة (SSIs) المرتبطة بالمكورات العنقودية الذهبية بـ ≥1 من تلوث منطقة العمل الخاصة بالتخدير في وقت الجراحة.21 في دراسة أجريت في المركز الطبي Dartmouth Hitchcock Medical Center، ارتبط التنظيف بعد بدء التخدير وتنظيم المساحات النظيفة/المتسخة واستخدام الأقمشة المصنوعة من الألياف الدقيقة واستخدام مناديل تطهير السطح المبللة متعددة الاستخدامات بانخفاض كبير في عدد اماكن التلوث المَقيسة التي تتجاوز 100 وحدة من وحدات المستعمرات (CFU) لكل عينة مساحة سطح،46 وتتجاوز حد التلوث المرتبط بأحداث الانتقال عالية الخطورة التي ترتبط بالعدوى لاحقًا.8,10,20,56 كانت هذه النتائج مشابهة لتجربة عبور مصممة جيدًا في بيئة وحدة العناية المركزة (ICU) حيث أدت زيادة تكرار مرات التنظيف واستخدام الأقمشة المصنوعة من الألياف الدقيقة إلى الحد من التلوث البكتيري.28 عندما يتم استخدام الأشعة فوق البنفسجية المبيدة للجراثيم (UV-C) كجزء من نهج متعدد الجوانب مستند إلى الأدلة (بما في ذلك تحسين التكرار وجودة تنظيف السطح البيئي وتطهيره والزيادة باستخدام الأشعة فوق البنفسجية المبيدة للجراثيم (UV-C) وعلاج المريض من مسببات الأمراض المقاومة لمضادات الميكروبات والرعاية المرتبطة بالأوعية الدموية ونظافة اليدين)، يمكن تقليل انتقال المكورات العنقودية الذهبية بشكل كبير وانتقال فيروس سارس SARS-CoV-2 وعدوى مكان الجراحة (SSIs).‏⁹

ميزات التنفيذ الرئيسية: استخدام التنظيف بعد بدء التخدير/التسكين كطريقة لمعالجة ذروة مهمة في التلوث البيئي، وتنظيم المساحات النظيفة/المتسخة،43,46 وزيادة تنظيف الأسطح وتطهيرها باستخدام الأشعة فوق البنفسجية المبيدة للجراثيم (UV-C) المستندة إلى الأدلة.8‏‎-10,58 من المهم أن تأخذ أجهزة الأشعة فوق البنفسجية المبيدة للجراثيم (UV-C) المحددة في الحسبان أهمية وقت غرف العمليات،59 وأن إستراتيجيات التنفيذ قد تم تحديدها، وأن تكون ذات فعالية مثبتة لمنع انتقال العوامل المسببة للأمراض البكتيرية والفيروسية في أثناء العملية.

الخلاصة

تُعد فرق التخدير في وضع جيد للعمل بشكل متعاون مع فريق الجراحة/التمريض في أثناء الفترة المحيطة بالجراحة لتقليل انتقال البكتيريا في أثناء الفترة المحيطة بالجراحة والعدوى اللاحقة إلى أقصى حد. تم تطوير التدابير الأساسية لمكافحة العدوى واختبارها بدقة مع إثبات الفعالية والكفاءة وقابلية التنفيذ والتطبيق العملي. يعود الأمر إلى اختصاصيي التخدير في التصرف بناءً على هذه المعلومات لتحسين سلامة المريض في أثناء الفترة المحيطة بالجراحة.

 

Jonathan E. Charnin،‏ MD، أستاذ مساعد في التخدير بمنظمة مايو كلينك، روتشيستر، مينيسوتا.

Melanie Hollidge،‏ MD،‏ PhD، أستاذة مساعدة في التخدير بجامعة روتشيستر، روتشيستر، نيويورك.

Raquel Bartz،‏ MD،‏ MMCi، أستاذ مساعد في التخدير بمستشفى Brigham and Women’s Hospital، بوسطن، ماساتشوستس.

Desiree Chappell،‏ CRNA، نائب مدير الجودة السريرية، NorthStar Anesthesia، إيرفينج، تكساس.

Jonathan M. Tan،‏ MD،‏ MPH،‏ MBI،‏ FASA، أستاذ مساعد في التخدير والعلوم المحيطة، Children’s Hospital Los Angeles، لوس أنجلوس، كاليفورنيا، كلية كيك للطب ومعهد العلوم المحيطة، جامعة جنوب كاليفورنيا، لوس أنجلوس، كاليفورنيا.

Morgan Hellman،‏ RN،‏ BSN، مدير المبيعات السريري في شركة Pall Corporation، بورت واشنطن، نيويورك.

Sara McMannus،‏ RN،‏ BSN،‏ MBA، مستشارة سريرية، بمؤسسة Sepsis Alliance، سان دييغو، كاليفورنيا.

Richard A. Beers،‏ MD، أستاذ في التخدير بجامعة أبستيت الطبية، سيراكيوز، نيويورك.

Michelle Beam،‏ DO،‏ MBA،‏ FASA، أستاذ مساعد في التخدير بجامعة Penn Medicine، ويست تشيستر، بنسلفانيا.

Randy Loftus‏، MD، أستاذ مساعد في التخدير بجامعة آيوا، آيوا سيتي، آيوا.

تضارب المصالح: Randy Loftus،‏ MD، يبلغ عن تمويل البحث الحالي من NIH R01 AI155752-01A1، “تجربة أساسية: تحسين تنفيذ النهج والمراقبة المستندة إلى الأدلة لمنع انتقال البكتيريا والعدوى” وقد تلقى تمويلاً من مؤسسة التخدير وسلامة المرضى Anesthesia Patient Safety Foundation وشركات Sage Medical Inc.‎ وBBraun وDraeger وSurfacide وKenall، كما أن لديه براءة اختراع واحدة أو أكثر معلقة، بالإضافة إلى كونه شريكًا في شركة RDB Bioinformatics, LLC وRun Networks في 1055 N 115th St #301, Omaha, NE 68154، وهي شركة تمتلك OR PathTrac، وقد تحدث في اجتماعات تعليمية برعاية شركتي Kenall وBBraun. تستخدم جامعة آيوا نظام RDB Bioinformatics PathTrac لقياس انتقال البكتيريا.

Jonathan Tan،‏ MD،‏ MPH،‏ MBI،‏ FASA، يتلقى تمويلاً للمنحة البحثية من مؤسسة (Anesthesia Patient Safety Foundation (APSF ومؤسسة Anesthesia Education and Research (FAER)‎.

Desiree Chappell،‏ CRNA، عضو في مكتب المتحدثين لشركتي Medtronic وEdwards LifeSciences وعضو في اللجنة الاستشارية لشركة ProVation.

Jonathan Charnin وMelanie Hollidge وRaquel Bartz وMorgan Hellman وSarah McMannus وRichard Beers وMichelle Beam ليس لديهم أي تضارب في المصالح.

المراجع

  1. Dexter F, Parra MC, Brown JR, et al. Perioperative COVID-19 defense: an evidence-based approach for optimization of infection control and operating room management. Anesth Analg. 2020;131:37–42. PMID: 32217947.
  2. Centers for Disease Control and Infection Prevention. Guidance for Tecovirimat use under expanded access investigational new drug protocol during 2022 U.S. monkeypox cases. https://www.cdc.gov/poxvirus/monkeypox/clinicians/Tecovirimat.html. Published 2022. Accessed July 26, 2022.
  3. Centers for Disease Control and Infection Prevention. Candida auris. Published 2022. https://www.cdc.gov/fungal/candida-auris/index.html. Accessed July 26, 2022
  4. Magill SS, Hellinger W, Cohen J, et al. Prevalence of healthcare-associated infections in acute care hospitals in Jacksonville, Florida. Infect Control Hosp Epidemiol. 2012;33:283–291. PMID: 22314066.
  5. Vogel TR, Dombrovskiy VY, Lowry SF. Impact of infectious complications after elective surgery on hospital readmission and late deaths in the U.S. Medicare population. Surg Infect (Larchmt). 2012;13:307–311. PMID: 23082877.
  6. Awad SS. Adherence to surgical care improvement project measures and post-operative surgical site infections. Surg Infect (Larchmt). 2012;13(4):234-237. PMID: 22913334.
  7. Centers for Disease Control and Infection Prevention. How can I get ahead of sepsis? https://www.cdc.gov/sepsis/prevention/index.html. Published 2022. Accessed July 26, 2022.
  8. Loftus RW, Dexter F, Goodheart MJ, et al. The effect of improving basic preventive measures in the perioperative arena on Staphylococcus aureus transmission and surgical site infections: a randomized clinical trial. JAMA Netw Open. 2020;3:e201934. PMID: 32219407.
  9. Loftus RW, Dexter F, Evans L, et al. Evidence-based intraoperative infection control measures plus feedback are associated with attenuation of severe acute respiratory syndrome coronavirus-2 detection in operating rooms. Br J Anaesth. 2022;129:e29–e32. PMID: 35643533.
  10. Wall RT, Datta S, Dexter F, et al. Effectiveness and feasibility of an evidence-based intraoperative infection control program targeting improved basic measures: a post-implementation prospective case-cohort study. J Clin Anesth. 2022;77:110632. PMID: 34929497.
  11. Warner MA, Warner ME. The evolution of the anesthesia patient safety movement in america: lessons learned and considerations to promote further improvement in patient safety. Anesthesiology. 2021;135:963–974. PMID: 34666350.
  12. Munoz-Price LS, Bowdle A, Johnston BL, et al. Infection prevention in the operating room anesthesia work area. Infect Control Hosp Epidemiol. 2019;40:1–17. PMID: 30526699.
  13. Association for Professionals in Infection Control. Infection preventionist’s guide to the OR. https://apic.org/infection-preventionists-guide-to-the-or/. Published 2018. Accessed July 29, 2022.
  14. Berrios-Torres SI, Umscheid CA, Bratzler DW, et al. Centers for Disease Control and Prevention guideline for the prevention of surgical site infection, 2017. JAMA Surg. 2017;152:784–791. PMID: 28467526.
  15. American Society of Anesthesiologists. Infection control and prevention. https://www.asahq.org/shop-asa/e020s10w02. Published 2022. Accessed July 26, 2022.
  16. American Association of Nurse Anesthesiology. Infection prevention and control guidelines for anesthesia care. https://www.aana.com/docs/default-source/practice-aana-com-web-documents-(all)/professional-practice-manual/infection-prevention-and-control-guidelines-for-anesthesia-care.pdf?sfvrsn=850049b1. Published 2015. Accessed July 26, 2022.
  17. Menz BD, Charani E, Gordon DL, et al. Surgical antibiotic prophylaxis in an era of antibiotic resistance: common resistant bacteria and wider considerations for practice. Infect Drug Resist. 2021;14:5235–5252. PMID: 34908856.
  18. Dexter F, Epstein RH, Loftus RW. Quantifying and interpreting inequality of surgical site infections among operating rooms. Can J Anaesth. 2021;68:812–824. PMID: 33547628.
  19. Dexter F, Ledolter J, Wall RT, et al. Sample sizes for surveillance of S. aureus transmission to monitor effectiveness and provide feedback on intraoperative infection control including for COVID-19. Perioper Care Oper Room Manag. 2020;20:100115. PMID: 32501426.
  20. Loftus RW, Brown JR, Koff MD, et al. Multiple reservoirs contribute to intraoperative bacterial transmission. Anesth Analg. 2012;114:1236–1248. PMID: 22467892.
  21. Loftus RW, Dexter F, Robinson ADM, Horswill AR. Desiccation tolerance is associated with Staphylococcus aureus hypertransmissibility, resistance and infection development in the operating room. J Hosp Infect. 2018;100:299–308. PMID: 29966756.
  22. Loftus RW, Brown JR, Patel HM, et al. Transmission dynamics of gram-negative bacterial pathogens in the anesthesia work area. Anesth Analg. 2015;120:819–826. PMID: 25790209.
  23. Hadder B, Patel HM, Loftus RW. Dynamics of intraoperative Klebsiella, Acinetobacter, Pseudomonas, and Enterobacter transmission. Am J Infect Control. 2018;46:526–532. PMID: 29395508.
  24. Loftus RW, Muffly MK, Brown JR, et al. Hand contamination of anesthesia providers is an important risk factor for intraoperative bacterial transmission. Anesth Analg. 2011;112:98–105. PMID: 20686007.
  25. Rupp ME, Fitzgerald T, Puumala S, et al. Prospective, controlled, cross-over trial of alcohol-based hand gel in critical care units. Infect Control Hosp Epidemiol. 2008;29:8–15. PMID: 18171181.
  26. Koff MD, Brown JR, Marshall EJ, et al. Frequency of hand decontamination of intraoperative providers and reduction of postoperative healthcare-associated infections: a randomized clinical trial of a novel hand hygiene system. Infect Control Hosp Epidemiol. 2016;37:888–895. PMID: 27267310.
  27. Konvalinka A, Errett L, Fong IW. Impact of treating Staphylococcus aureus nasal carriers on wound infections in cardiac surgery. J Hosp Infect. 2006;64:162–168. PMID: 16930768.
  28. Wilson APR, Smyth D, Moore G, et al. The impact of enhanced cleaning within the intensive care unit on contamination of the near-patient environment with hospital pathogens: a randomized crossover study in critical care units in two hospitals. Crit Care Med. 2011;39:651–658. PMID: 21242793.
  29. Phillips M, Rosenberg A, Shopsin B, et al. Preventing surgical site infections: a randomized, open-label trial of nasal mupirocin ointment and nasal povidone-iodine solution. Infect Control Hosp Epidemiol. 2014;35:826–832. PMID: 24915210.
  30. Schweizer ML, Chiang HY, Septimus E, et al. Association of a bundled intervention with surgical site infections among patients undergoing cardiac, hip, or knee surgery. JAMA. 2015;313:2162–2171. PMID: 26034956.
  31. Bode LGM, Kluytmans JAJW, Wertheim HFL, et al. Preventing surgical-site infections in nasal carriers of Staphylococcus aureus. N Engl J Med. 2010;362:9–17. PMID: 20054045.
  32. Huang SS, Singh R, McKinnell JA, et al. Decolonization to reduce postdischarge infection risk among MRSA carriers. N Engl J Med. 2019;380:638–650. PMID: 30763195.
  33. von Eiff C, Becker K, Machka K, et al. Nasal carriage as a source of Staphylococcus aureus bacteremia. Study Group. N Engl J Med. 2001;344:11–16. PMID: 11136954.
  34. Kluytmans JA, Mouton JW, VandenBergh MF, et al. Reduction of surgical-site infections in cardiothoracic surgery by elimination of nasal carriage of Staphylococcus aureus. Infect Control Hosp Epidemiol. 1996;17:780–785. PMID: 8985763.
  35. Bhalla A, Aron DC, Donskey CJ. Staphylococcus aureus intestinal colonization is associated with increased frequency of S. aureus on skin of hospitalized patients. BMC Infect Dis. 2007;7:105. 17848192.
  36. Murray CJL, Ikuta KS, Sharara F, et al. Antimicrobial Resistance Collaborators. Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019: a systematic analysis. Lancet. 2022;399:629–655. PMID: 35065702.
  37. Laxminarayan R, Duse A, Wattal C, et al. Antibiotic resistance—the need for global solutions. Lancet Infect Dis. 2013;13:1057–1098. PMID: 24252483.
  38. Patel JB, Gorwitz RJ, Jernigan JA. Mupirocin resistance. Clin Infect Dis. 2009;49:935–941. PMID: 19673644.
  39. Houang ET, Gilmore OJ, Reid C, Shaw EJ. Absence of bacterial resistance to povidone iodine. J Clin Pathol. 1976;29:752–755. PMID: 821972.
  40. Bigliardi PL, Alsagoff SAL, El-Kafrawi HY, et al. Povidone iodine in wound healing: a review of current concepts and practices. Int J Surg. 2017;44:260–268. PMID: 28648795.
  41. Koff MD, Loftus RW, Burchman CC, et al. Reduction in intraoperative bacterial contamination of peripheral intravenous tubing through the use of a novel device. Anesthesiology. 2009;110:978–985. PMID: 19352154.
  42. Koff MD, Corwin HL, Beach ML, et al. Reduction in ventilator associated pneumonia in a mixed intensive care unit after initiation of a novel hand hygiene program. J Crit Care. 2011;26:489–495. PMID: 21439767.
  43. Rowlands J, Yeager MP, Beach M, et al. Video observation to map hand contact and bacterial transmission in operating rooms. Am J Infect Control. 2014;42:698–701. PMID: 24969122.
  44. Bischoff WE, Reynolds TM, Sessler CN, et al. Handwashing compliance by health care workers: The impact of introducing an accessible, alcohol-based hand antiseptic. Arch Intern Med. 2000;160:1017–1021. PMID: 10761968.
  45. Birnbach DJ, Rosen LF, Fitzpatrick M, et al. Double gloves: a randomized trial to evaluate a simple strategy to reduce contamination in the operating room. Anesth Analg. 2015;120:848–852. PMID: 24836472.
  46. Clark C, Taenzer A, Charette K, Whitty M. Decreasing contamination of the anesthesia environment. Am J Infect Control. 2014;42:1223–1225. PMID: 25444268.
  47. Boyce JM, Pittet D, Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee. Society for Healthcare Epidemiology of America. Association for Professionals in Infection Control. Infectious Diseases Society of America. Hand Hygiene Task F. Guideline for hand hygiene in health-care settings: recommendations of the Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee and the HICPAC/SHEA/APIC/IDSA Hand Hygiene Task Force. Infect Control Hosp Epidemiol. 2002;23:S3–40. PMID: 12515399.
  48. Loftus RW, Patel HM, Huysman BC, et al. Prevention of intravenous bacterial injection from health care provider hands: the importance of catheter design and handling. Anesth Analg. 2012;115:1109–1119. PMID: 23051883.
  49. Loftus RW, Brindeiro BS, Kispert DP, et al. Reduction in intraoperative bacterial contamination of peripheral intravenous tubing through the use of a passive catheter care system. Anesth Analg. 2012;115:1315–1323. PMID: 23144441.
  50. Greene ES. Challenges in reducing the risk of infection when accessing vascular catheters. J Hosp Infect. 2021;113:130–144. PMID: 33713758.
  51. Moureau NL, Flynn J. Disinfection of needleless connector hubs: clinical evidence systematic review. Nurs Res Pract. 2015;2015:796762. PMID: 26075093.
  52. Lamberg JJ YL. Swab all vials with alcohol. APSF Newsletter. https://www.apsf.org/article/swab-all-vials-with-alcohol/. Published 2012. Accessed July 26, 2022.
  53. Bennett SN, McNeil MM, Bland LA, et al. Postoperative infections traced to contamination of an intravenous anesthetic, propofol. N Engl J Med. 1995;333:147–154. PMID: 7791816.
  54. Centers for Disease Control and Infection Prevention. Checklist for prevention of central line associated blood stream infections. https://www.cdc.gov/HAI/pdfs/bsi/checklist-for-CLABSI.pdf. Published 2014. Accessed July 26, 2022.
  55. Agency for Healthcare Research and Quality. Central line-associated bloodstream infections (CLABSI). https://www.ahrq.gov/topics/central-line-associated-bloodstream-infections-clabsi.html. Published 2022. Accessed July 26, 2022.
  56. Loftus RW, Koff MD, Burchman CC, et al. Transmission of pathogenic bacterial organisms in the anesthesia work area. Anesthesiology. 2008;109:399–407. PMID: 18719437.
  57. Robinson ADM, Dexter F, Renkor V, et al. Operating room PathTrac analysis of current intraoperative Staphylococcus aureus transmission dynamics. Am J Infect Control. 2019;47:1240–1247. PMID: 31036398.
  58. Loftus RW, Dexter F, Evans LC, et al. An assessment of the impact of recommended anesthesia work area cleaning procedures on intraoperative SARS-CoV-2 contamination, a case-series analysis. J Clin Anesth. 2021;73:110350. PMID: 34098391.
  59. Birchansky B, Dexter F, Epstein RH, Loftus RW. Statistical design of overnight trials for the evaluation of the number of operating rooms that can be disinfected by an ultraviolet light disinfection robotic system. Cureus. 2021;13:e18861. PMID: 34804714.